实验动物安乐死指南：不同物种的处理方法
在实验过程中，当实验无法继续或已结束时，实验者应遵循人道主义原则，以实验动物的利益为重，确保其得到妥善处置。安乐死是确保实验动物在无痛苦状态下离世的重要手段，其具体实施方式需根据动物的种类及研究课题来定。
01实验动物安乐死原则
重要原则
实验动物的安乐死需根据人道主义原则进行，并以实验动物的利益为重，根据实验目的选择合适的处死方法。
02具体物种处理方法
蛙类的治疗
对于蛙类的处理，我们通常采用金属探针插入枕骨大孔的方法来破坏其脑脊髓。在实施过程中，首先用湿布包裹蛙体，仅露出头部，然后左手固定蛙体实验动物安乐死指南：不同物种的处理方法，食指和拇指分别按压其头部前端和背部，使蛙头前俯。右手持探针，从头部凹陷处垂直刺入，直至探针穿过皮肤并进入枕骨大孔。此时，将探针尖端转向头部方向，深入颅腔并搅动，以彻底破坏脑组织。接下来，将探针从枕骨大孔刺入并转向尾部，刺入椎管，以破坏脊髓。脑和脊髓是否被完全破坏，可以通过检查蛙四肢肌肉的紧张性是否完全消失来判断。最后有什么方法可以安乐死，拔出探针并用干棉球堵住针孔，以防出血。在整个操作过程中，需格外小心，避免毒腺分泌物射入实验者眼内，若不慎被射入，应立即用生理盐水冲洗眼睛。
大鼠与小鼠的处理
对于大鼠与小鼠的处理，我们同样需要破坏其脑脊髓。常用的方法是采用金属探针插入枕骨大孔的方式进行。在操作时，首先用湿布包裹动物体，仅露出头部，然后固定动物，使其头部前俯。接着，用探针从头部凹陷处垂直刺入，直至穿过皮肤并进入枕骨大孔。在确保探针尖端深入颅腔后，进行搅动以彻底破坏脑组织。随后，将探针从枕骨大孔转向尾部，刺入椎管，以破坏脊髓。最后，检查动物四肢肌肉的紧张性是否完全消失，以判断脑和脊髓是否被完全破坏。完成操作后，拔出探针并用干棉球堵住针孔，以防出血。在整个过程中，需特别小心，避免毒腺分泌物射入实验者眼内，若不慎被射入，应立即用生理盐水冲洗眼睛。
颈椎脱臼法：此法需右手紧握鼠尾，同时左手拇指与食指协同向下按压鼠头，从而拉断脊髓与脑髓，使鼠立即丧命。
断头法：利用剪刀在鼠颈部果断剪切，鼠头一旦被断，鼠即刻死亡。
击打法：右手提起鼠尾，将其高高抬起后，用力猛击其头部，使鼠因痉挛而迅速死去。或者，用木锤重击鼠头部同样可致其死亡。
急性大出血法：通过使鼠眼眶动脉和静脉发生急性大量失血，可迅速导致鼠的死亡。
药物致死法：让鼠吸入一定量的一氧化碳、乙醚、氯仿等气体，这些气体均可导致动物死亡。
其他物种的处理
接下来实验动物安乐死指南：不同物种的处理方法，我们讨论狗、兔、豚鼠的处理方法。
空气栓塞法：通过向动物静脉内注入一定量的空气，造成栓塞致死。注入的空气会在右心与血液形成泡沫状有什么方法可以安乐死，随血液循环至全身。若进入肺动脉，会阻塞其分支；进入心脏冠状动脉，则会造成冠状动脉阻塞，引发严重的血液循环障碍，导致动物迅速死亡。通常，向兔、猫等动物的静脉内注入20～40ml空气即可致死；而每条狗的前肢或后肢皮下静脉注入80～150ml空气，也能迅速致死。
急性失血法：首先对动物进行轻度麻醉，如给狗按每公斤体重静脉注射硫喷妥钠20～30mg，使其快速进入睡眠状态。接着，暴露股三角区，用锋利的杀狗刀在该区域作一个约10厘米的横切口，完全切断股动、静脉，导致立即喷出大量血液。用湿纱布不断擦去股动脉切口周围的血液和血凝块，同时用自来水持续冲洗流血处，保持股动脉切口的畅通。此方法下，动物会在3～5分钟内死亡有什么方法可以安乐死，且过程安静、对脏器无损伤，非常适合采集病理切片标本。
若在处死狗的同时需要采集其血液，可在轻度麻醉后将其固定在狗手术台上。然后分离颈动脉，插入一根较粗的塑料管。放低狗头，打开动脉夹，使动脉血流入装有抗凝血的容器内，并不断摇晃以防血液凝固。
